正規醫院做個精液檢查只要幾十塊錢。
精液常規分析包括精液量、精液外觀、液化時間、PH、粘稠度、精子密度、活力與活動率、存活率以及形態學分析等。
（一）精液量
WHO推薦使用的精液量測定方法有兩種，一是用錐形底的刻度量筒法，二是稱重法。因稱重法與精液密度有關，故推薦以刻度量筒法檢測精液量為好。不推薦用目測法來檢測精液量。
精液量的正常參考範圍為2～6ml。發現精液量少時，應注意詢問收集方式是否正確，或鑑別是否有逆行射精，此時可囑咐患者留取尿液，顯微鏡觀察尿液中是否有大量精子，必要時尿液可離心後再鏡檢。
臨床意義：精液量少於0.5ml，為無精液症；0.5～2ml為少精液症；多於6ml為多精液症。無精液症常見於不射精或逆行射精；少精液症在排除人為因素如性生活頻度高、精液收集不完整後，常見於附屬性腺感染、不完全性逆行射精和精囊的發育不全；多精液症常見於附屬性腺功能亢進。
（二）外觀
正常精液外觀呈乳白色、均質、半流體狀液體。臨床意義：長時間未排精的人射出的精液略帶淡黃色，老年男性精液呈暗黃色。精液清亮、透明常見於無精子或少精子症男性；精液呈棕紅色或帶血，稱為血精，常見於精囊性炎、前列腺炎等生殖系統疾病，也可於苗勒管囊腫、結石、腫瘤如前列腺癌、輸精管的微小損害等。
（三）液化時間
精液標本留取後應充分混勻（但不能劇烈搖動），置於35℃～37℃水浴箱中待其液化。正常精液標本在60分鐘內液化，但通常情況下在15分鐘內精液液化即完成。因此，精液液化後即可進行精液常規指標的檢測。
男科實驗室常常會遇到液化不全的精液標本，如果不進行處理，將會影響到檢測結果的準確性。對於液化不全精液標本，可以加入1%的10mg/ml的靡蛋白酶，混勻後置37℃水浴箱中溫育30分鐘後，精液液化可明顯改進，此操作不影響精漿生化指標包括@葡糖苷酶、酸性磷酸酶和果糖的檢測，但精子運動指標中直線性可顯著降低（P＝0.025），側擺幅度可顯著升高（P＝0.029），而其他指標如精子密度、活動率、a+b級活動率、直線運動速度、曲線運動速度、鞭打頻率、平均路徑速度等不受影響。機械混勻或菠蘿蛋白酶對促進精液液化可能也起作用。這樣的操作應記錄在檢測報告上。
臨床意義：精液液化不全在排除人為因素（射出精液的第一部分丟失）後，常見於前列腺疾病，特別是和前列腺炎有關。
（四）PH值
推薦有PH試紙進行檢測。將一滴混勻精液在PH試紙上均勻展開，30秒鐘內，與標準帶進行比較讀出其PH值。
正常精液PH值為7.2～8.0。
臨床意義：當附屬性腺或者附睪有急性感染性疾病時，精液的PH值可以大於8.0.當輸精管阻塞或先天精囊腺缺如時，均可導致精液PH值降低。測定精液PH值應在精液液化後立即測定，因為精液放置時間較長會影響PH值測定結果。
（五）粘稠度
一般用一滴管吸入精液，而後讓精液依靠重力滴落並觀察拉絲長度，如果長度大於2釐米，視為異常。也可以用一玻棒插入精液中，提起玻棒，觀察拉絲長度，同樣視長度大於2釐米為異常。粘稠度增加，與精液液化不全一樣，同樣會影響精液分析結果，處理方法同液化不全精液標本。
（六）精子密度
精子密度檢測結果的準確性主要取決於精子計數池。儘管WHO手冊推薦使用改良牛鮑氏血細胞計數板作為精子計數池。並且建議了質量控制方法，但許多其他型別的計數池亦被引入男科學實驗室，包括一次性計數池如DROP、Standard Count、Cell Vision 、MicroCell等，它們均為20μm深，精液無需稀釋即可直接分析，均為透過毛細管作用加樣的計數池；反覆使用的計數池，包括2X-CEL、Makler、JCD、Burker及血球計數池，前兩者池深20μm，精液無需稀釋即可分析，而後三者精液均需作1：20稀釋；以及既可一次性又可反覆使用的Cell-VU計數池。這些計數池的精確性和準確性已被廣泛地評價和比較。
（七）精子活力與活動率
精子活力即精子的運動能力。精子活力的分析有手工和CASA系統分析兩種方法。不推薦使用手工方法分析精子活力，而推薦使用CASA系統分析精子活力。因為精子活力的手工分析方法十分不準確。活動精子可能在幾秒鐘內已從一個視野進入另一個視野。而且，精子活力分析受時間和溫度的影響，手工分析時這種影響更大。CASA系統是一種比較客觀的分析精子活力的方法，具有較高的精確性。但CASA系統分析精子活力時需進行人工校正，在保證計算機捕捉的精子數與視野中真實的精子數一致後，再進行分析。
推薦精子活力分類標準：精子活力分為a、b、c、d四級：
a級：快速前向運動，即37℃時速度≥25 μm/s，或20℃時速度≥20μm/s；25μm大約相當於5個頭的長度或半個尾的長度；
b級：慢速或呆滯的前向運動；
c級：非前向運動
d級：不動。
精子活動率為a+b+c級精子百分率總和。
可選擇精子活力分類標準：精子活力分為a、b、c三級：
a級：前向運動；
b級：非前向運動；
c級：不動。
精子活動率為a+b級精子百分率總和。
臨床意義：正常生育男性a級精子≥25%，a+b級精子≥50%，精子活動率≥60%。精子活力降低，即a級精子<25%，a+b級精子<50%時，稱為弱精子症，病因複雜，最可能與附屬性腺或附睪炎症有關。
（八）精子存活率
精子存活率以活精子所佔百分比表示，可用染色技術確定，一般採用伊紅染色法。這是由於死精子的細胞膜受損可透入一定染料，從而使死精子著色而活精子不著色。用光學顯微鏡計數200個精子，即可得出精子存活率。伊紅Y染色法：用生理鹽水將伊紅配製成5g/L的溶液，將一滴新鮮精液與一滴伊紅Y溶液在載玻片上混勻，並覆以蓋玻片，30秒後用光學顯微鏡觀察，活精子不著色，死精子被染成紅色。
精子存活率的正常參考值為：≥75%
臨床意義：精子存活率可用以核實精子活力的準確性，精子存活率一般高於精子活動率，因為死精子比例不應超過不動精子的比例。如果活的但不動的精子佔很大的比例，應懷疑精子鞭毛結構有缺陷。
（九）精子形態學分析
正常形態精子百分率是評價精子受精能力的重要指標之一。目前，用於精子形態學分析的染色方法有：改良巴氏染色法、蘇木精—伊紅染色法、瑞氏染色法、瑞吉氏染色法、Diff—Quik染色法和Shorr染色法。6種染色方法對精子頭大小的影響不同，瑞—吉氏和瑞氏染色法的精子頭的長軸和短軸最低，而HE和Shorr染色法的精子頭長長軸和短軸介於巴氏染色法和Diff—Quik染色法之間。6種精子染色方法的染色效果亦不同，Diff—Quik和Shorr染色法可以很清楚地區分頂體和核，其次是HE染色法，而巴氏、瑞氏和瑞—吉氏染色的精子頂體和核分界不很明顯。基於不同染色方法對精子頭大小的影響、染色效果以及操作的簡易與否，Diff—Quik和Shorr染色法值得推薦。
正規醫院做個精液檢查只要幾十塊錢。
精液常規分析包括精液量、精液外觀、液化時間、PH、粘稠度、精子密度、活力與活動率、存活率以及形態學分析等。
（一）精液量
WHO推薦使用的精液量測定方法有兩種，一是用錐形底的刻度量筒法，二是稱重法。因稱重法與精液密度有關，故推薦以刻度量筒法檢測精液量為好。不推薦用目測法來檢測精液量。
精液量的正常參考範圍為2～6ml。發現精液量少時，應注意詢問收集方式是否正確，或鑑別是否有逆行射精，此時可囑咐患者留取尿液，顯微鏡觀察尿液中是否有大量精子，必要時尿液可離心後再鏡檢。
臨床意義：精液量少於0.5ml，為無精液症；0.5～2ml為少精液症；多於6ml為多精液症。無精液症常見於不射精或逆行射精；少精液症在排除人為因素如性生活頻度高、精液收集不完整後，常見於附屬性腺感染、不完全性逆行射精和精囊的發育不全；多精液症常見於附屬性腺功能亢進。
（二）外觀
正常精液外觀呈乳白色、均質、半流體狀液體。臨床意義：長時間未排精的人射出的精液略帶淡黃色，老年男性精液呈暗黃色。精液清亮、透明常見於無精子或少精子症男性；精液呈棕紅色或帶血，稱為血精，常見於精囊性炎、前列腺炎等生殖系統疾病，也可於苗勒管囊腫、結石、腫瘤如前列腺癌、輸精管的微小損害等。
（三）液化時間
精液標本留取後應充分混勻（但不能劇烈搖動），置於35℃～37℃水浴箱中待其液化。正常精液標本在60分鐘內液化，但通常情況下在15分鐘內精液液化即完成。因此，精液液化後即可進行精液常規指標的檢測。
男科實驗室常常會遇到液化不全的精液標本，如果不進行處理，將會影響到檢測結果的準確性。對於液化不全精液標本，可以加入1%的10mg/ml的靡蛋白酶，混勻後置37℃水浴箱中溫育30分鐘後，精液液化可明顯改進，此操作不影響精漿生化指標包括@葡糖苷酶、酸性磷酸酶和果糖的檢測，但精子運動指標中直線性可顯著降低（P＝0.025），側擺幅度可顯著升高（P＝0.029），而其他指標如精子密度、活動率、a+b級活動率、直線運動速度、曲線運動速度、鞭打頻率、平均路徑速度等不受影響。機械混勻或菠蘿蛋白酶對促進精液液化可能也起作用。這樣的操作應記錄在檢測報告上。
臨床意義：精液液化不全在排除人為因素（射出精液的第一部分丟失）後，常見於前列腺疾病，特別是和前列腺炎有關。
（四）PH值
推薦有PH試紙進行檢測。將一滴混勻精液在PH試紙上均勻展開，30秒鐘內，與標準帶進行比較讀出其PH值。
正常精液PH值為7.2～8.0。
臨床意義：當附屬性腺或者附睪有急性感染性疾病時，精液的PH值可以大於8.0.當輸精管阻塞或先天精囊腺缺如時，均可導致精液PH值降低。測定精液PH值應在精液液化後立即測定，因為精液放置時間較長會影響PH值測定結果。
（五）粘稠度
一般用一滴管吸入精液，而後讓精液依靠重力滴落並觀察拉絲長度，如果長度大於2釐米，視為異常。也可以用一玻棒插入精液中，提起玻棒，觀察拉絲長度，同樣視長度大於2釐米為異常。粘稠度增加，與精液液化不全一樣，同樣會影響精液分析結果，處理方法同液化不全精液標本。
（六）精子密度
精子密度檢測結果的準確性主要取決於精子計數池。儘管WHO手冊推薦使用改良牛鮑氏血細胞計數板作為精子計數池。並且建議了質量控制方法，但許多其他型別的計數池亦被引入男科學實驗室，包括一次性計數池如DROP、Standard Count、Cell Vision 、MicroCell等，它們均為20μm深，精液無需稀釋即可直接分析，均為透過毛細管作用加樣的計數池；反覆使用的計數池，包括2X-CEL、Makler、JCD、Burker及血球計數池，前兩者池深20μm，精液無需稀釋即可分析，而後三者精液均需作1：20稀釋；以及既可一次性又可反覆使用的Cell-VU計數池。這些計數池的精確性和準確性已被廣泛地評價和比較。
（七）精子活力與活動率
精子活力即精子的運動能力。精子活力的分析有手工和CASA系統分析兩種方法。不推薦使用手工方法分析精子活力，而推薦使用CASA系統分析精子活力。因為精子活力的手工分析方法十分不準確。活動精子可能在幾秒鐘內已從一個視野進入另一個視野。而且，精子活力分析受時間和溫度的影響，手工分析時這種影響更大。CASA系統是一種比較客觀的分析精子活力的方法，具有較高的精確性。但CASA系統分析精子活力時需進行人工校正，在保證計算機捕捉的精子數與視野中真實的精子數一致後，再進行分析。
推薦精子活力分類標準：精子活力分為a、b、c、d四級：
a級：快速前向運動，即37℃時速度≥25 μm/s，或20℃時速度≥20μm/s；25μm大約相當於5個頭的長度或半個尾的長度；
b級：慢速或呆滯的前向運動；
c級：非前向運動
d級：不動。
精子活動率為a+b+c級精子百分率總和。
可選擇精子活力分類標準：精子活力分為a、b、c三級：
a級：前向運動；
b級：非前向運動；
c級：不動。
精子活動率為a+b級精子百分率總和。
臨床意義：正常生育男性a級精子≥25%，a+b級精子≥50%，精子活動率≥60%。精子活力降低，即a級精子<25%，a+b級精子<50%時，稱為弱精子症，病因複雜，最可能與附屬性腺或附睪炎症有關。
（八）精子存活率
精子存活率以活精子所佔百分比表示，可用染色技術確定，一般採用伊紅染色法。這是由於死精子的細胞膜受損可透入一定染料，從而使死精子著色而活精子不著色。用光學顯微鏡計數200個精子，即可得出精子存活率。伊紅Y染色法：用生理鹽水將伊紅配製成5g/L的溶液，將一滴新鮮精液與一滴伊紅Y溶液在載玻片上混勻，並覆以蓋玻片，30秒後用光學顯微鏡觀察，活精子不著色，死精子被染成紅色。
精子存活率的正常參考值為：≥75%
臨床意義：精子存活率可用以核實精子活力的準確性，精子存活率一般高於精子活動率，因為死精子比例不應超過不動精子的比例。如果活的但不動的精子佔很大的比例，應懷疑精子鞭毛結構有缺陷。
（九）精子形態學分析
正常形態精子百分率是評價精子受精能力的重要指標之一。目前，用於精子形態學分析的染色方法有：改良巴氏染色法、蘇木精—伊紅染色法、瑞氏染色法、瑞吉氏染色法、Diff—Quik染色法和Shorr染色法。6種染色方法對精子頭大小的影響不同，瑞—吉氏和瑞氏染色法的精子頭的長軸和短軸最低，而HE和Shorr染色法的精子頭長長軸和短軸介於巴氏染色法和Diff—Quik染色法之間。6種精子染色方法的染色效果亦不同，Diff—Quik和Shorr染色法可以很清楚地區分頂體和核，其次是HE染色法，而巴氏、瑞氏和瑞—吉氏染色的精子頂體和核分界不很明顯。基於不同染色方法對精子頭大小的影響、染色效果以及操作的簡易與否，Diff—Quik和Shorr染色法值得推薦。