黑膠蟲
1、 黑膠蟲概況：
在細胞培養的時候,有時會在400倍顯微鏡下看到小黑點在動,小黑點有時呈點狀,有時呈小的片狀,運動形式為在原地振動（類似布朗運動）,這種小黑點既不是細菌、黴菌,也不是支原體（我們曾經請周守長用血平板培養過,沒有菌落出現）,目前業內人士稱其為“黑膠蟲”.
黑膠蟲到底是否為生物?這個一直是業內人士的疑惑.黑膠蟲一般是存在血清裡的,而血清通常是經過0.1μm濾膜過濾的,所以血清裡不可能存在細菌、黴菌及支原體等微生物.如果說黑膠蟲不是生物,它會不斷增多,達到一定數量時會與細胞競爭性生長,與細胞競爭培養基中的營養,從而使得細胞營養不足而死亡.
不管對於黑膠蟲的爭論如何,但有幾個是目前大家公認的：
① 與細胞競爭性生長,對細胞生長有不利影響.
② “黑膠蟲”會增殖,增殖多時,視野下一大片都為“黑膠蟲”.
2、目前對“黑膠蟲”的定論：有2種解釋：
第一, 黑膠蟲為生物.它是小於細菌的生物,直徑小於0.1μm,大多國外血清中多見,可能是國外牛血清中含有的某種原蟲.只要它是生物,那麼在培養基中一定會對細胞有影響.
第二, 黑膠蟲不是生物.國內的血清中,通常滅活之後都會有絮狀沉澱出現,而黑膠蟲出現時,所使用的血清被反覆凍融過多次.所以推測,所謂的“黑膠蟲”其實就是血清中的某些蛋白成分的物質,經過滅活之後喪失活性,在培養基中,鏡檢見到的運動其實是這些物質在溶液中做“布朗運動”.隨著細胞消耗培養基,這些物質越來越多,最後細胞所用的營養消耗完,細胞容易死亡.
3、對於“黑膠蟲”的處理方法：
首先,血清買回來滅活前凍融應逐級凍融,即按照-20℃——4℃完全融化後,再置入水浴中,與室溫一起升高到56度,這樣的目的是避免溫度驟變,導致血清中的營養物質喪失活性.
第二,血清滅活後分裝儲存.按照每次用血清的量分裝,儘量減少血清凍融的次數.分裝時注意無菌.
第三,細胞培養時血清濃度稍大一些.通常細胞培養血清濃度為10%-15%,但如果血清凍融次數過多,那營養物質喪失活性,按15%的濃度配製事實上達不到15%的營養成分,故培養基配置時一般用18%-20%的血清.
1.奈米細菌的發現
芬蘭的一個科學家Ciftcioglu et al 在其細胞培養過程中, 發現在胎牛血清中存在一種直徑50-500 nm的微粒; 這種顆粒物對伽瑪射線具有很強的耐受性; 針對包括支原體在內的所有已知微生物的特異性檢測實驗均為陰性; 這種顆粒物在血瓊脂培養基以及支原體培養基中無法生長, 通常的細菌染色方法難以著色. 因此, Kajander判定這是一種新的微生物, 根據其體型微小並且棲息在血液中的特點, 將其命名為Nanobacterium sanguineum, 簡稱Nanobacteria, 中文譯名奈米細菌, 並將菌種保存於德國微生物儲存中心 (DSM No: 5819-5821, the GermanCollection of Micro-organisms, Braunschweig, Germany).
2 奈米細菌的生物學特性
2.1 奈米細菌——哺乳動物體內最小的細菌 細胞培養時所使用的血清通常採用過濾法達到無菌的目的, 通常採用直徑0.1 μm的濾膜過濾除菌. Kajander研究發現, 0.1 μm
的濾膜過濾並不能有效地清除血清中的奈米細菌, 但是血清經過0.05 μm的濾膜過濾則能有效清除奈米細菌汙染. 細胞培養條件下的奈米細菌經過0.2 μm的濾膜過濾後約有3%的奈米細菌可以透過濾膜, 而在加壓過濾的情況下, 約有50%的奈米細菌可以透過0.2 μm的濾膜. 剛剛經過過濾的奈米細菌在相差顯微鏡下無法發現, 但在不含血清新增劑的細胞培養液中培養24 h後, 即可以用相差顯微鏡觀測到. 電子顯微鏡觀察顯示, 奈米細菌的平均直徑為200 nm, 而子代奈米細菌的最小直徑僅50 nm. 傳統的觀點認為, 只有當細胞直徑在不低於140 nm時, 才能維持其最基本的新陳代謝. Kajander認為, 奈米細菌可能是地球形成早期、在原始大氣條件下的一種最原始的生命形式, 因此不能用衡量已經經過幾十億年進化的生命形式的觀點去衡量這種古老的生命形式, 並且推測, 奈米細菌遭受不良因素的侵害後可以形成許多的體形微小的碎片, 並將其釋放到環境中, 每一個碎片都可能攜帶部分遺傳資訊, 在特定條件下, 這些"基本"顆粒聚集在一起形成群落, 當足夠數量的"基本"顆粒提供完整的遺傳資訊時, 則可以形成新的奈米細菌.
2.2 奈米細菌緩慢的增殖週期
微生物學家通常是透過對某種微生物進行培養, 進而瞭解該種微生物的特性. 然而, 並非每種微生物都是可以在實驗室中進行培養的,主要原因在於這些微生物的培養條件我們並不清楚, 其生存環境以及是否與其他微生物存在共生關係我們並不十分了解. 奈米細菌就是一種對生長環境要求非常苛刻的微生物, 其新陳代謝率極為緩慢, 僅為普通細菌的1/10 000. 研究發現, 奈米細菌主要利用環境中的氨基酸而不是葡萄糖來提供能量, 谷氨醯胺、天冬醯胺以及精氨酸均可被其利用. 在37 ℃有50-10 mL/L的二氧化碳及900-950 mL/L的空氣存在的潮溼環境下, 並且在含有100 mL/L胎牛血清和適量谷氨醯胺的pH值7.4的細胞培養基中, 奈米細菌能夠緩慢生長, 平均倍增時間為3 d,而在無血清的細胞培養基中, 其增殖速度變慢, 細菌倍增時間可延長至5-6 d, 在新增適量促奈米細菌生長因子BGF(一種桿菌培養上清的超濾液)或N3(奈米細菌培養上清的超濾液)的條件下, 其增殖速度加快, 倍增時間可縮短至0.6-1 d. 在有促奈米細菌生長因子BGF存在的條件下, 奈米細菌甚至可以在固體培養基中生長, 並形成直徑l mm大小的細菌集落.
2.3 奈米細菌獨特的生物礦化現象
當在含血清的培養基中培養的奈米細菌被轉移至不含血清的培養基中繼續培養時 (DMEM或RPMI-1640), 在1 a之內就可以觀察到奈米細菌出現貼壁現象, 在1 wk之內, 就可以在奈米細菌的周圍形成幾微米厚的生物被膜 (biofilm), 並且緊緊貼附於培養瓶底部, 而奈米細菌棲息其中(這與在含血清培養基中培養的奈米細菌的形態明顯不同), 此時其大小接近於一個酵母細胞, 2-3 wk以後, 由於生物被膜的增厚, 其直徑已近似於一個紅細胞的大小. 用EDX法對這種生物被膜的化學組成進行分析, 顯示其鈣磷的峰值與羥基磷灰石極其相似, 電子顯微鏡觀察以及傅立葉轉換紅外頻譜(fourier transform IR spectroscopy, FTIR)分析顯示其主要成分為碳酸羥基磷灰石(carbonate hydroxyapatite), 而且,不論在有無血清作為新增劑的情況下, 都可以見到這種被羥基磷灰石包繞的奈米細菌, 這種情況甚至可以在處於分裂期的奈米細菌中見到. 奈米細菌並不產生尿激酶和鹼性磷酸酶, 並且即便經過長達數週的培養, 其培養基的pH值也不會出現明顯的變化, 一直穩定在7.4左右, 這表明在奈米細菌細胞膜表面所生成的羥基磷灰石結晶是源自於生物大分子的, 即生物礦化現象, 而並非是由於pH值改變所導致的簡單的物理結晶現象.奈米細菌利用培養體系中的鈣、磷合成羥基磷灰石作為其生物被膜的主要成分, 這種生物礦化過程受到生長環境中某些因素的調控, 從而使其呈現不同的外觀, 如羥基磷灰石形、細菌被膜形、沙粒形、結石形和類似腫瘤的外形. （這也許就是國內的一些研究者們認為其是一些磷酸鹽類的無機物的部分原因吧!）.在含有新鮮血清的培養基中奈米細菌的生物礦化現象程度較輕微, 這是由於血清中含有強效羥基磷灰石合成抑制因子, 骨鈣素 (osteocalcin) 和胎球蛋白(fetuin), 由於這些抑制蛋白的存在, 所以在有血清存在的情況下, 奈米細菌的生物礦化作用受到明顯抑制. 當血清濃度降低時, 奈米細菌的生物礦化現象增強, 在不含血清的培養體系中, 生物礦化現象劇烈而迅速. 儘管改良的Loeffler固體培養基中含有750 mL/L血清成分, 但血清蛋白成分在滅菌過程中受到破壞, 所以在此培養基中的奈米細菌的礦化作用並不受抑制, 在此培養基中生長的奈米細菌其菌落直徑可達1-5 mm. 另外, 當有乙二胺四乙酸(EDTA)存在時, 奈米細菌的生物現象會受到明顯的抑制.由於礦化生物被膜的保護作用以及極其緩慢的新陳代謝率, 使奈米細菌能夠耐受各種不利的物理條件和化學損傷因素以及多種抗生素的打擊.
2.4奈米細菌的檢測方法 由於奈米細菌在標準微生物培養基中無法生長, 並且即便是在最適宜其生長的細胞培養環境中, 奈米細菌的生長也極為緩慢, 其新陳代謝率僅為普通細菌的萬分之一, 這使得許多基於檢測細菌新陳代謝的微生物學方法無法檢測奈米細菌的存在. 由於奈米細菌難以用傳統的火焰法和乙醇法固定, 並且大多數染料無法穿透其細胞壁, 而且不能用普通顯微鏡對其進行觀察, 因此常規的細菌學染色法並不能檢測到奈米細菌的存在. 透過Kajander et al 的研究, 發現70℃幹烤10 min, 可以將其有效固定; 另外, 用茜素紅S、剛果紅以及硝酸銀染料可以使奈米細菌著色; 而培養狀態下的奈米細菌可以在放大400倍的相差顯微鏡下清晰地觀察其生長情況; 用DNA熒光染料 (Dapi或Hoechst) 按普通細菌DNA染色的條件對奈米細菌DNA進行染色均不成功, 而當按照線粒體DNA以及病毒DNA染色條件, 對奈米細菌DNA進行染色時, 熒光顯微鏡下可以觀察到特徵性的熒光; 用奈米細菌特異性抗體進行熒光染色也可以清晰地顯示奈米細菌的存在; 利用電子顯微鏡對經過負染的奈米細菌進行觀察, 可以清晰的顯示80-350 nm大小、單獨或聚整合簇的奈米細菌以及其表面的生物被膜(biofilm)結構; 而用透射電鏡對奈米細菌的超薄切片進行觀察, 可以清晰的顯示其內部結構.
可以發現如下的特點：
（1） 與細胞共生,細胞長的好或密度大的話,小黑點就少,反之則 多；
（2） 對抗生素無效；
（3） 可能透過培養箱空氣進行汙染；
（4） 單用培養液及血清培養沒發現問題.
（5） 換掖沖洗後也無效.
以下是論壇裡我找來的相關帖子內容
“黑膠蟲”是近十幾年才發現的一種細胞汙染物,“黑膠蟲”的分類目前尚無鑑定確認.
“黑膠蟲”可寄生於動物細胞,也可以生存於培養基中,依靠細胞和培養基中的營養為生,並隨細胞傳代而傳代.“黑膠蟲”與細胞競爭性生長,開始時對細胞並沒有什麼影響,但當黑膠蟲的數量多到一定程度的時候, 細胞生長就會受到影響直至死亡,嚴重影響了科研活動的開展和進行.所以“黑膠蟲”的汙染常在培養條件改變、細胞接種密度降低、細胞狀態不佳時顯現並使實驗中斷,尤其在凍存細胞復甦時可造成大量細胞死亡.
B. 據說這是黑膠蟲,又有人說是原生動物,好象也沒個統一的說法
C. 據病毒所和軍科院鑑定是一種寄生於牛血清內的一種原蟲,似乎和草履蟲和變形蟲有類似之處,然而由於課題經費不夠而不能繼續進行下去.
D. 有人說是奈米級的細菌
其他的特點
（1）形態上有些像細菌,直徑約在0.5~1微米,
（2） 在400X倒置顯微鏡小,有典型的布朗運動（不規則的原地小距離抖動）.
（3） 細胞內好像也有存在,
（4） 但並不引起培養液混濁
（5） 時間稍長,細胞狀態明顯惡化,並最後死亡
大家的處理：
1.換好一點的血清（我覺著和血清的關係不大）.
2.如果是貼壁細胞的話,可用無菌的PBS洗幾次,可一定程度上緩解.若是懸浮的話,就不太好處理拉,可以向其中少加一點滋養細胞（從小鼠腹腔內取的巨噬細胞,這種細胞不分裂,過一陣就死掉了,做抗體雜交瘤融合的同志肯定知道）.加滋養細胞對有黑膠蟲的剛復甦的細胞很有效!還有就是實驗環境要注意好,保持細胞間整個環境的潔淨度.
3.換用進口的一次性塑膠培養瓶.
4.建議清理無菌室所有物品,重新滅菌,用KMnO4燻蒸,按首次使用無菌室做,細胞重新復甦,.
5. 在換液前先加入生理鹽水並輕輕拍打,沖洗乾淨後再加入培養液,堅持天天洗,傳代時加生理鹽水再離心一次,接種密度稍大一些,一段時間後,蟲子就會大大減少,對細胞的生長也不會有大的影響.
6.有材料稱minocycline具有一定的作用,可以和換液結合起來使用.
黑膠蟲
1、 黑膠蟲概況：
在細胞培養的時候,有時會在400倍顯微鏡下看到小黑點在動,小黑點有時呈點狀,有時呈小的片狀,運動形式為在原地振動（類似布朗運動）,這種小黑點既不是細菌、黴菌,也不是支原體（我們曾經請周守長用血平板培養過,沒有菌落出現）,目前業內人士稱其為“黑膠蟲”.
黑膠蟲到底是否為生物?這個一直是業內人士的疑惑.黑膠蟲一般是存在血清裡的,而血清通常是經過0.1μm濾膜過濾的,所以血清裡不可能存在細菌、黴菌及支原體等微生物.如果說黑膠蟲不是生物,它會不斷增多,達到一定數量時會與細胞競爭性生長,與細胞競爭培養基中的營養,從而使得細胞營養不足而死亡.
不管對於黑膠蟲的爭論如何,但有幾個是目前大家公認的：
① 與細胞競爭性生長,對細胞生長有不利影響.
② “黑膠蟲”會增殖,增殖多時,視野下一大片都為“黑膠蟲”.
2、目前對“黑膠蟲”的定論：有2種解釋：
第一, 黑膠蟲為生物.它是小於細菌的生物,直徑小於0.1μm,大多國外血清中多見,可能是國外牛血清中含有的某種原蟲.只要它是生物,那麼在培養基中一定會對細胞有影響.
第二, 黑膠蟲不是生物.國內的血清中,通常滅活之後都會有絮狀沉澱出現,而黑膠蟲出現時,所使用的血清被反覆凍融過多次.所以推測,所謂的“黑膠蟲”其實就是血清中的某些蛋白成分的物質,經過滅活之後喪失活性,在培養基中,鏡檢見到的運動其實是這些物質在溶液中做“布朗運動”.隨著細胞消耗培養基,這些物質越來越多,最後細胞所用的營養消耗完,細胞容易死亡.
3、對於“黑膠蟲”的處理方法：
首先,血清買回來滅活前凍融應逐級凍融,即按照-20℃——4℃完全融化後,再置入水浴中,與室溫一起升高到56度,這樣的目的是避免溫度驟變,導致血清中的營養物質喪失活性.
第二,血清滅活後分裝儲存.按照每次用血清的量分裝,儘量減少血清凍融的次數.分裝時注意無菌.
第三,細胞培養時血清濃度稍大一些.通常細胞培養血清濃度為10%-15%,但如果血清凍融次數過多,那營養物質喪失活性,按15%的濃度配製事實上達不到15%的營養成分,故培養基配置時一般用18%-20%的血清.
1.奈米細菌的發現
芬蘭的一個科學家Ciftcioglu et al 在其細胞培養過程中, 發現在胎牛血清中存在一種直徑50-500 nm的微粒; 這種顆粒物對伽瑪射線具有很強的耐受性; 針對包括支原體在內的所有已知微生物的特異性檢測實驗均為陰性; 這種顆粒物在血瓊脂培養基以及支原體培養基中無法生長, 通常的細菌染色方法難以著色. 因此, Kajander判定這是一種新的微生物, 根據其體型微小並且棲息在血液中的特點, 將其命名為Nanobacterium sanguineum, 簡稱Nanobacteria, 中文譯名奈米細菌, 並將菌種保存於德國微生物儲存中心 (DSM No: 5819-5821, the GermanCollection of Micro-organisms, Braunschweig, Germany).
2 奈米細菌的生物學特性
2.1 奈米細菌——哺乳動物體內最小的細菌 細胞培養時所使用的血清通常採用過濾法達到無菌的目的, 通常採用直徑0.1 μm的濾膜過濾除菌. Kajander研究發現, 0.1 μm
的濾膜過濾並不能有效地清除血清中的奈米細菌, 但是血清經過0.05 μm的濾膜過濾則能有效清除奈米細菌汙染. 細胞培養條件下的奈米細菌經過0.2 μm的濾膜過濾後約有3%的奈米細菌可以透過濾膜, 而在加壓過濾的情況下, 約有50%的奈米細菌可以透過0.2 μm的濾膜. 剛剛經過過濾的奈米細菌在相差顯微鏡下無法發現, 但在不含血清新增劑的細胞培養液中培養24 h後, 即可以用相差顯微鏡觀測到. 電子顯微鏡觀察顯示, 奈米細菌的平均直徑為200 nm, 而子代奈米細菌的最小直徑僅50 nm. 傳統的觀點認為, 只有當細胞直徑在不低於140 nm時, 才能維持其最基本的新陳代謝. Kajander認為, 奈米細菌可能是地球形成早期、在原始大氣條件下的一種最原始的生命形式, 因此不能用衡量已經經過幾十億年進化的生命形式的觀點去衡量這種古老的生命形式, 並且推測, 奈米細菌遭受不良因素的侵害後可以形成許多的體形微小的碎片, 並將其釋放到環境中, 每一個碎片都可能攜帶部分遺傳資訊, 在特定條件下, 這些"基本"顆粒聚集在一起形成群落, 當足夠數量的"基本"顆粒提供完整的遺傳資訊時, 則可以形成新的奈米細菌.
2.2 奈米細菌緩慢的增殖週期
微生物學家通常是透過對某種微生物進行培養, 進而瞭解該種微生物的特性. 然而, 並非每種微生物都是可以在實驗室中進行培養的,主要原因在於這些微生物的培養條件我們並不清楚, 其生存環境以及是否與其他微生物存在共生關係我們並不十分了解. 奈米細菌就是一種對生長環境要求非常苛刻的微生物, 其新陳代謝率極為緩慢, 僅為普通細菌的1/10 000. 研究發現, 奈米細菌主要利用環境中的氨基酸而不是葡萄糖來提供能量, 谷氨醯胺、天冬醯胺以及精氨酸均可被其利用. 在37 ℃有50-10 mL/L的二氧化碳及900-950 mL/L的空氣存在的潮溼環境下, 並且在含有100 mL/L胎牛血清和適量谷氨醯胺的pH值7.4的細胞培養基中, 奈米細菌能夠緩慢生長, 平均倍增時間為3 d,而在無血清的細胞培養基中, 其增殖速度變慢, 細菌倍增時間可延長至5-6 d, 在新增適量促奈米細菌生長因子BGF(一種桿菌培養上清的超濾液)或N3(奈米細菌培養上清的超濾液)的條件下, 其增殖速度加快, 倍增時間可縮短至0.6-1 d. 在有促奈米細菌生長因子BGF存在的條件下, 奈米細菌甚至可以在固體培養基中生長, 並形成直徑l mm大小的細菌集落.
2.3 奈米細菌獨特的生物礦化現象
當在含血清的培養基中培養的奈米細菌被轉移至不含血清的培養基中繼續培養時 (DMEM或RPMI-1640), 在1 a之內就可以觀察到奈米細菌出現貼壁現象, 在1 wk之內, 就可以在奈米細菌的周圍形成幾微米厚的生物被膜 (biofilm), 並且緊緊貼附於培養瓶底部, 而奈米細菌棲息其中(這與在含血清培養基中培養的奈米細菌的形態明顯不同), 此時其大小接近於一個酵母細胞, 2-3 wk以後, 由於生物被膜的增厚, 其直徑已近似於一個紅細胞的大小. 用EDX法對這種生物被膜的化學組成進行分析, 顯示其鈣磷的峰值與羥基磷灰石極其相似, 電子顯微鏡觀察以及傅立葉轉換紅外頻譜(fourier transform IR spectroscopy, FTIR)分析顯示其主要成分為碳酸羥基磷灰石(carbonate hydroxyapatite), 而且,不論在有無血清作為新增劑的情況下, 都可以見到這種被羥基磷灰石包繞的奈米細菌, 這種情況甚至可以在處於分裂期的奈米細菌中見到. 奈米細菌並不產生尿激酶和鹼性磷酸酶, 並且即便經過長達數週的培養, 其培養基的pH值也不會出現明顯的變化, 一直穩定在7.4左右, 這表明在奈米細菌細胞膜表面所生成的羥基磷灰石結晶是源自於生物大分子的, 即生物礦化現象, 而並非是由於pH值改變所導致的簡單的物理結晶現象.奈米細菌利用培養體系中的鈣、磷合成羥基磷灰石作為其生物被膜的主要成分, 這種生物礦化過程受到生長環境中某些因素的調控, 從而使其呈現不同的外觀, 如羥基磷灰石形、細菌被膜形、沙粒形、結石形和類似腫瘤的外形. （這也許就是國內的一些研究者們認為其是一些磷酸鹽類的無機物的部分原因吧!）.在含有新鮮血清的培養基中奈米細菌的生物礦化現象程度較輕微, 這是由於血清中含有強效羥基磷灰石合成抑制因子, 骨鈣素 (osteocalcin) 和胎球蛋白(fetuin), 由於這些抑制蛋白的存在, 所以在有血清存在的情況下, 奈米細菌的生物礦化作用受到明顯抑制. 當血清濃度降低時, 奈米細菌的生物礦化現象增強, 在不含血清的培養體系中, 生物礦化現象劇烈而迅速. 儘管改良的Loeffler固體培養基中含有750 mL/L血清成分, 但血清蛋白成分在滅菌過程中受到破壞, 所以在此培養基中的奈米細菌的礦化作用並不受抑制, 在此培養基中生長的奈米細菌其菌落直徑可達1-5 mm. 另外, 當有乙二胺四乙酸(EDTA)存在時, 奈米細菌的生物現象會受到明顯的抑制.由於礦化生物被膜的保護作用以及極其緩慢的新陳代謝率, 使奈米細菌能夠耐受各種不利的物理條件和化學損傷因素以及多種抗生素的打擊.
2.4奈米細菌的檢測方法 由於奈米細菌在標準微生物培養基中無法生長, 並且即便是在最適宜其生長的細胞培養環境中, 奈米細菌的生長也極為緩慢, 其新陳代謝率僅為普通細菌的萬分之一, 這使得許多基於檢測細菌新陳代謝的微生物學方法無法檢測奈米細菌的存在. 由於奈米細菌難以用傳統的火焰法和乙醇法固定, 並且大多數染料無法穿透其細胞壁, 而且不能用普通顯微鏡對其進行觀察, 因此常規的細菌學染色法並不能檢測到奈米細菌的存在. 透過Kajander et al 的研究, 發現70℃幹烤10 min, 可以將其有效固定; 另外, 用茜素紅S、剛果紅以及硝酸銀染料可以使奈米細菌著色; 而培養狀態下的奈米細菌可以在放大400倍的相差顯微鏡下清晰地觀察其生長情況; 用DNA熒光染料 (Dapi或Hoechst) 按普通細菌DNA染色的條件對奈米細菌DNA進行染色均不成功, 而當按照線粒體DNA以及病毒DNA染色條件, 對奈米細菌DNA進行染色時, 熒光顯微鏡下可以觀察到特徵性的熒光; 用奈米細菌特異性抗體進行熒光染色也可以清晰地顯示奈米細菌的存在; 利用電子顯微鏡對經過負染的奈米細菌進行觀察, 可以清晰的顯示80-350 nm大小、單獨或聚整合簇的奈米細菌以及其表面的生物被膜(biofilm)結構; 而用透射電鏡對奈米細菌的超薄切片進行觀察, 可以清晰的顯示其內部結構.
可以發現如下的特點：
（1） 與細胞共生,細胞長的好或密度大的話,小黑點就少,反之則 多；
（2） 對抗生素無效；
（3） 可能透過培養箱空氣進行汙染；
（4） 單用培養液及血清培養沒發現問題.
（5） 換掖沖洗後也無效.
以下是論壇裡我找來的相關帖子內容
“黑膠蟲”是近十幾年才發現的一種細胞汙染物,“黑膠蟲”的分類目前尚無鑑定確認.
“黑膠蟲”可寄生於動物細胞,也可以生存於培養基中,依靠細胞和培養基中的營養為生,並隨細胞傳代而傳代.“黑膠蟲”與細胞競爭性生長,開始時對細胞並沒有什麼影響,但當黑膠蟲的數量多到一定程度的時候, 細胞生長就會受到影響直至死亡,嚴重影響了科研活動的開展和進行.所以“黑膠蟲”的汙染常在培養條件改變、細胞接種密度降低、細胞狀態不佳時顯現並使實驗中斷,尤其在凍存細胞復甦時可造成大量細胞死亡.
B. 據說這是黑膠蟲,又有人說是原生動物,好象也沒個統一的說法
C. 據病毒所和軍科院鑑定是一種寄生於牛血清內的一種原蟲,似乎和草履蟲和變形蟲有類似之處,然而由於課題經費不夠而不能繼續進行下去.
D. 有人說是奈米級的細菌
其他的特點
（1）形態上有些像細菌,直徑約在0.5~1微米,
（2） 在400X倒置顯微鏡小,有典型的布朗運動（不規則的原地小距離抖動）.
（3） 細胞內好像也有存在,
（4） 但並不引起培養液混濁
（5） 時間稍長,細胞狀態明顯惡化,並最後死亡
大家的處理：
1.換好一點的血清（我覺著和血清的關係不大）.
2.如果是貼壁細胞的話,可用無菌的PBS洗幾次,可一定程度上緩解.若是懸浮的話,就不太好處理拉,可以向其中少加一點滋養細胞（從小鼠腹腔內取的巨噬細胞,這種細胞不分裂,過一陣就死掉了,做抗體雜交瘤融合的同志肯定知道）.加滋養細胞對有黑膠蟲的剛復甦的細胞很有效!還有就是實驗環境要注意好,保持細胞間整個環境的潔淨度.
3.換用進口的一次性塑膠培養瓶.
4.建議清理無菌室所有物品,重新滅菌,用KMnO4燻蒸,按首次使用無菌室做,細胞重新復甦,.
5. 在換液前先加入生理鹽水並輕輕拍打,沖洗乾淨後再加入培養液,堅持天天洗,傳代時加生理鹽水再離心一次,接種密度稍大一些,一段時間後,蟲子就會大大減少,對細胞的生長也不會有大的影響.
6.有材料稱minocycline具有一定的作用,可以和換液結合起來使用.