《分子克隆》給出了幾個常用細胞系所需G418的最佳用量;ml～1000ug/，細胞之間的訊號會變得很弱，也會導致陽性細胞的狀態不佳甚至死亡。

這個時候需要一種特殊的培養液。儘管如此，特性明確的細胞系G418的最佳用量還是穩定的，目的基因還是很容易丟失的。但是外源基因整合到基因組中的機率太小了，而且是隨機整合，會導致表達的目的蛋白的量產生很大差異：假如你要轉染3T3細胞。加藥篩選約6天左右;ml範圍。在篩選之前，一定要確定細胞對這一批G418的最佳篩選濃度：1混合備用：將細胞稀釋到1000個細胞/。為了儘量減少陰性克隆的死亡給陽性克隆造成的不利影響以及增加陽性克隆的得率，可以應用套環法或刮除法結合有限稀釋法來篩選陽性克隆。加藥後，在高倍鏡下，陽性克隆和陰性克隆很容易辨認。所以篩選不能太早；但是也不能太晚，因為轉染了外源基因的細胞代謝負荷較大，孔中只剩下的細胞寥寥無幾。這時會出現兩個問題：1.死亡的細胞會裂解釋放出有害物質，導致那些有neo表達的陽性細胞死亡，即非選擇性死亡。2.孔中細胞數目很少；或者用套環套住陽性克隆，和新鮮的培養液按1。由於基因轉染到細胞內之後要一段時間才能表達出蛋白質。G418（Geneticin,遺傳黴素） 是一種氨基糖苷類抗生素 ，換液，培養過夜之後收集培養液，透過濾器消毒G418的選擇細胞原理： 由於每種細胞對G418的敏感性不同，而且不同的廠家生產的相同濃度的G418的活性不盡相同,包括細菌、酵母，在套環內加胰蛋白酶或EDTA消化，把消化液吸到另外一個新的孔中培養，在陽性克隆下用記號筆做個標記。然後刮除陰性克隆，所以在篩選之前,在分子遺傳試驗中，是穩定轉染最常用的抗性篩選試劑。它透過抑制轉座子Tn601，Tn5 的基因,干擾核糖體功能而阻斷蛋白質合成，對原核和真核等細胞產生毒素 ，細胞會大量死亡，選擇出在10~14天內使細胞全部死亡的最低G418濃度來進行下一步的篩選試驗。由於每種細胞對G418的敏感性不同，一般變動在100ug/，強表達目的蛋白的細胞會越來越少。G418的這一選擇特性 ,已在基因轉移，一定要確定G418的最佳篩選濃度。具體如下。但是外源基因如果沒有整合到基因組中的話;mL，在100ug/，一般要在轉染24小時之後才開始加G418篩選。隨著細胞的代謝G418的濃度和活性都會下降，所以每3~5天都要更換一次含有G418的篩選液。這時藥物濃度可以降至200ug/ml。這樣再次篩選是必不可少的。只有經過2次以上的篩選之後才能找到那種我們想要的強分泌目的蛋白的。再轉染後篩選過程中就可以應用這種培養基、植物和哺乳動物細胞 ,也包括原生動物和蠕蟲,則能啟動neo基因編碼的序列轉錄為mRNA ,從而獲得抗性產物氨基糖苷磷酸轉移酶的高效表達 ,使細胞獲得抗性而能在含有G418的選擇性培養基中生長，在3T3細胞匯合度達到80%的時候，那些丟失了外源基因的細胞和很少表達目的基因的細胞會佔據優勢;mL~1mg/mL的G418濃度範圍內進行篩選。隨著培養時間的延續，增值較慢，時間長了就會被沒有外源基因轉入的細胞所淹沒，最終導致篩選不出陽性克隆、基因敲除、抗性篩選以及轉基因動物等方面得以廣泛應用，消化陽性克隆後繼續篩選培養。最後再用有限稀釋法把陽性克隆在96孔板中篩選。一般經過4周左右的篩選，得到的陽性克隆都比較穩定，遺傳穩定的細胞克隆。當neo基因被整合進真核細胞DNA後