你好，蛋白儲存是個比較棘手的問題，就我的理解來講：

蛋白的儲存很大程度上依賴於蛋白本身的結構穩定性，其次和儲存條件最佳化有關；

儘量避免蛋白的反覆凍融，這會對蛋白的結構和活性造成破壞；

像你說到的第二天就要用，根本沒必要放在-70℃低溫，一般來講，儘量安排好實驗週期，在3天內用完蛋白（4℃儲存）是理想條件；

如果不得不儲存，要分裝，留下馬上就用的放在4℃，其他放低溫，每次取1只；如果有凍幹機，凍成乾粉再放到-70比液態低溫更好，再溶解也會好很多（但很多蛋白還是會有失活問題）；

關於保護劑，如果蛋白穩定性不強，一般會加甘油（5%-50%濃度）和疊氮鈉（抑菌），這樣一來，取出時，不得不做透析或脫鹽，以去除甘油和疊氮鈉，會帶來損失，相比而言，凍乾粉就好很多；

關於咪唑的去除問題，如果確信咪唑的存在對你後續的實驗沒影響，可以不去；但實際上，很多實驗都會受到咪唑的影響，或者說一旦實驗有疑問，你就無法判定是否是因為咪唑，所以建議你去咪唑，去咪唑的方式包括：透析、濃縮管離心、脫鹽柱。個人認為，去除效率、最省時、蛋白回收率最高的辦法是脫鹽柱。