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熒光定量Western Blot,絕對不是上樣量越多越好。可靠的Western Blot印跡資料透過載入適當量的樣品才能獲得。載入過多的蛋白會導致訊號飽和或用於檢測的熒光基團的自猝滅。

那麼,您如何知道要載入多少裂解液呢?首先使用BCA或Bradford等蛋白測定方法測量裂解液樣品的濃度。一旦知道樣品的濃度,便可以確保每種樣品的載入量相同。

於此同時,您仍然需要一種方法來校準凝膠載入量和轉印效率的問題。蛋白印跡定量的最佳方法和新共識是將蛋白進行歸一化。許多期刊都接受了總蛋白質歸一化(TPN),有些期刊(例如《JBC》)甚至要求作者在Western印跡的定量資料時使用TPN或使用驗證過的看家蛋白進行歸一化。

在下面的實驗中,載入了0.2-50µg的HeLa裂解物,以檢測靶標蛋白STAT3與內參對照GAPDH和總蛋白膜染色的效能。儘管Total-PVDF膜染色線性最高至50μg裂解物,但這顯然不是靶標蛋白STAT3載入的理想上樣量,因為訊號在12.5μg以上不再線性。上樣控制GAPDH的歸一化提出了一個嚴重的問題,因為它在裂解物的濃度低於1µg時呈線性,因此其定量用途非常有限。

一般而言,我們建議不要加入超過20µg的裂解物,因為這通常會導致蛋白定量方面的問題。為了獲得最佳的熒光定量Western印跡,不要忘記應用適當的歸一化策略並載入適量的蛋白。

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參考文獻:

1. Collecting and presenting data. The Journal of Biological Chemistry.

website.:http://jbcresources.asbmb.org/collecting-and-presenting-data#blot. Accessed February 4, 2019.

2. Fosang AJ and Colbran RJ. Transparency Is the Key to Quality. J Biol Chem. Dec. 11 2015. 290(50). 29692–29694. PMCID: PMC4705984.

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