RNA的Brachet實驗是經典的分離RNA組分的方法，其主要步驟如下：

1. 研磨細胞：首先用鹽水沖洗細胞，然後用冰涼的異丙醇將細胞研磨成細胞碎片。

2. 離心去除細胞核：使用離心去除碎片中的細胞核。

3. 分離RNA：分別使用苯酚和氯仿提取RNA，並用異丙醇將其沉澱。

4. 溶解RNA：將RNA用緩衝液溶解後，測定其濃度。

在實驗中需要注意以下幾點：

1. 嚴格遵循生物安全的實驗規範，避免RNA樣品受到汙染。

2. 盡可能採用RNAase-free品質的實驗耗材，以避免樣品在處理過程中降解。

3. 製備過程中需要保持樣品溫度的低溫和鬆弛狀態，以防RNA氧化和降解。

4. 所有實驗操作需要快速完成，以避免RNA受到氧化和降解的影響。

5. 在離心、提取和沉澱等步驟中需要注意操作技巧，使RNA樣品完整且純度高。

6. 所有步驟需要嚴格按照預定程序進行操作，以確保實驗結果準確可靠。

總之，RNA的Brachet實驗需要細心謹慎的操作和精確的技術，才能得到高質量的RNA樣品。

1.RNA在細胞內極易降解，樣本選擇時一定要選取新鮮的樣本組織或者取樣後迅速低溫處理（液氮速凍）；樣本出現多次反復凍融後，RNA得率會嚴重下降，也會導致RNA降解；RNA提取環境要保持無RNA酶汙染； 　　2.RNA容易受到環境汙染導致RNA嚴重降解，建議實驗過程中注意更換實驗手套，使用所有耗材應該均無RNA酶的一次性耗材； 　　

3.試劑盒中BufferEB（RNA專用）中含有少量EDTA，可能影響下游實驗，使用時適當稀釋，如果用其他洗脫液洗脫，要確保PH>7.5，PH過低影響洗脫效率； 　　

4.離心柱漂洗完成後，盡可能烘乾柱膜上殘留乙醇，殘留乙醇會影響洗脫效率和下游實驗效果；柱膜也不建議過度乾燥，沒有乙醇味道殘留最好，如果過度乾燥可能影響RNA溶解；如果A260/230值過低，說明樣本提取過程中漂洗不徹底，有鹽離子殘留，建議增加漂洗次數； 　　

5.對於RNA提取，A260/280<1.9說明有可能存在DNA汙染或者蛋白汙染，如果洗脫樣本時沒有使用BufferEB，而使用ddH20（確保無RNA酶），比值或偏低，因為Ph值會影響吸光值，並不表示樣本純度低。

需要高質量的樣品，不能出現髒雜質，否則會干擾實驗的結果
操作人員需要穿戴手套，注意無菌操作，避免RNA的汙染
實驗室環境需要保證乾淨、整潔，避免灰塵和雜物進入實驗器材
4、注意實驗器材的消毒和清潔，保證實驗數據的準確性
5、對於不同物種的RNA，操作方法和條件可能會存在差異，需要根據實際情況進行調整

1.提取操作時必須戴手套、口罩等防止RNA酶的影響

2.盡可能在低溫下操作

3.適量斟酌Trizon等的用量;在每一次離心後除盡蛋白質、不溶物。

4.Trizon帶有腐蝕性,操作時注意安全(1分)

答: Brachet實驗是RNA的化學成分研究經典實驗之一。
1. 如果您想進行Brachet實驗，您需要注意以下事項：首先，RNA樣本需要純，否則會影響實驗結果。
其次，實驗過程中需要嚴格控制反應條件、反應時間等因素。
最後，實驗結果的解釋需要結合RNA的結構、功能等進行考慮。
2. 除了Brachet實驗，對RNA的研究工作也非常多，涵蓋了RNA的結構、功能、類別等方面。
所以在進行RNA的相關實驗時，需要全面了解RNA的特點，掌握相關專業知識。

RNA Brachet實驗是一種常用的分子生物學技術，以下是實驗注意事項：

1. 實驗環境應保持無菌狀態，實驗器具和試劑應消毒處理，操作時應佩戴手套和口罩，避免口水和皮膚接觸樣品。

2. RNA樣品應該保存在-80℃低溫冰箱中，避免反復凍融。

3. 對RNA樣品進行放大時，應注意均勻性、準確性和精確性，尤其要注意去除DNA殘留。

4. 在反應過程中，需要保持反應緩慢均勻、溫度適宜、時間到位，操作時請嚴格按照程序進行。

5. PCR反應後，建議進行凝膠電泳檢查，確保目標RNA明顯有特異性，無汙染和意外反應產物的干擾。